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1. 紫外消毒30min后關(guān)閉紫外燈，開啟超凈臺(tái)正常工作狀態(tài)，用酒精消毒操作者的雙手。
2. 將所需的培養(yǎng)基，胰酶確保瓶身干凈后放于工作臺(tái)面內(nèi)，點(diǎn)燃酒精燈，將培養(yǎng)基和胰酶瓶口用酒精棉球擦拭后，再將瓶口對(duì)準(zhǔn)在酒精燈上消毒2-3次，旋開瓶蓋后再次分別消毒瓶口和瓶蓋，分別放于酒精燈的兩側(cè)。特別是將培養(yǎng)基瓶放于斜架上，瓶口對(duì)準(zhǔn)酒精燈，且放在距離酒精燈最近的位置，瓶蓋置于酒精燈的另一側(cè)。
3. 將培養(yǎng)瓶瓶口在酒精燈上消毒2-3次，旋開后分別再次消毒瓶口和瓶蓋2-3次，瓶蓋放于酒精燈右側(cè)后將培養(yǎng)瓶內(nèi)的培養(yǎng)液懸空倒進(jìn)污缸，在酒精燈消毒2-3次瓶口，豎直放好。取1ml移液器快速移動(dòng)在酒精燈上消毒1-2次，然后再裝上槍頭吸取1.5ml胰酶液，懸空移入培養(yǎng)瓶內(nèi)。
4. 將培養(yǎng)瓶平放使胰酶浸沒整個(gè)瓶壁的細(xì)胞層，計(jì)時(shí)約40s，立馬豎起對(duì)著燈光可觀察到細(xì)胞與細(xì)胞之間有針孔樣縫隙，并有1-2個(gè)細(xì)胞脫落，這時(shí)為胰酶消化的最適時(shí)機(jī)。若看到成片的細(xì)胞從瓶壁脫落為胰酶消化過度；若看不到針孔樣縫隙和細(xì)胞脫落，則需繼續(xù)消化，輕輕的迅速平放培養(yǎng)瓶使胰酶浸沒細(xì)胞層1s后迅速豎起對(duì)著燈光觀察細(xì)胞情況，可反復(fù)幾次，直至出現(xiàn)針孔樣縫隙和1-2個(gè)細(xì)胞脫落的最佳消化狀態(tài)。用移液器將胰酶吸凈。
5. 吸取1ml培養(yǎng)基于培養(yǎng)瓶內(nèi)，并用移液器吸取少量的培養(yǎng)基輕柔的反復(fù)沖洗培養(yǎng)瓶壁5-8次，使貼壁細(xì)胞完全脫落于培養(yǎng)基內(nèi)再輕輕吹打2-3次，使細(xì)胞盡可能處于單個(gè)懸浮狀態(tài)。
6. 取2或3個(gè)高壓后的新培養(yǎng)瓶，瓶口在酒精燈上消毒2-3次，旋開后分別再次消毒瓶口和瓶蓋2-3次分別放于酒精燈兩側(cè)，然后將細(xì)胞培養(yǎng)基均勻的分到3或4個(gè)培養(yǎng)瓶內(nèi)（注意原來傳代時(shí)使用的培養(yǎng)瓶可繼續(xù)傳代使用），進(jìn)行1傳3或1傳4的培養(yǎng)。
7. 拿出1支高壓后的5ml定量移液管，在酒精燈上灼燒尾部后裝于電動(dòng)移液器上，再次放于酒精燈上灼燒整個(gè)定量移液管管身2-3次，懸空進(jìn)入培養(yǎng)基瓶內(nèi)吸取4ml培養(yǎng)基懸空移入每個(gè)培養(yǎng)瓶內(nèi)，將培養(yǎng)瓶瓶口和瓶蓋在酒精燈上消毒2-3次后擰緊平放，在瓶身做好實(shí)驗(yàn)標(biāo)記。
8. 將培養(yǎng)基瓶口和瓶蓋消毒2-3次后擰緊，熄滅酒精燈，整理實(shí)驗(yàn)臺(tái)面，取出實(shí)驗(yàn)試劑及污缸等，關(guān)閉超凈工作臺(tái)。
9. 將培養(yǎng)瓶放于28℃,5%CO2的培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)，旋開瓶口少許。注意整個(gè)培養(yǎng)箱底托盤內(nèi)一定要放高壓后的水，且定期更換確保無菌。
每天定時(shí)觀察細(xì)胞生長情況，一般72-96h后，細(xì)胞生長密度大于90%，即可進(jìn)行細(xì)胞的傳代或保株。